DB31T+1702-2026種豬場豬繁殖與呼吸綜合征凈化技術規范

ICS11.220CCSB4131DB31/T1702—2026前言 2規范性引用文件 3術語和定義 4縮略語 5分級標準 6凈化途徑 7凈化場維持 8凈化場評估 附錄A（資料性）本底調查階段抽樣和監測樣品種類 5附錄B（規范性）凈化場維持的風險評估 6附錄C（規范性）凈化場維持的監測和動態評估 9附錄D（規范性）生產管理措施 10附錄E（資料性）凈化場評估抽樣 11DB31/T1702—2026本文件按照GB/T1.1—2020《標準化工作導則第1部分：標準化文件的結構和起草規則》的規定起草。請注意本文件的某些內容可能涉及專利。本文件的發布機構不承擔識別專利的責任。本文件由上海市農業農村委員會提出并組織實施。本文件由上海市畜牧業標準化技術委員會歸口。本文件起草單位：上海市動物疫病預防控制中心、中國農業科學院上海獸醫研究所、上海市浦東新區畜牧水產技術推廣中心、上海市崇明區動物疫病預防控制中心、上海市松江區動物疫病預防控制中心、上海市嘉定區動物疫病預防控制中心。本文件主要起草人：楊德全、鞠厚斌、趙洪進、楊顯超、陳琦、李國新、王建、吳秀娟、盧軍、李鑫、沈海瀟、沈素芳、王曉旭、葛杰、唐文紅、葛菲菲、朱九超、俞向前、葉惠萍、李閩、曹傳閨、唐燕婷、何隨彬、向蒙、馮桂丹、裴建武。DB31/T1702—2026種豬場豬繁殖與呼吸綜合征凈化技術規范本文件規定了種豬場豬繁殖與呼吸綜合征凈化的分級標準、凈化途徑、凈化場維持和凈化場評估等技術要求。本文件適用于上海市種豬場的豬繁殖與呼吸綜合征凈化。2規范性引用文件下列文件中的內容通過文中的規范性引用而構成本文件必不可少的條款。其中，注日期的引用文件，僅該日期對應的版本適用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改單）適用于本文件。GB/T17823集約化豬場防疫基本要求GB/T17824.3規模豬場環境參數與環境管理GB/T18090豬繁殖與呼吸綜合征診斷方法GB19489實驗室生物安全通用要求GB/T27517鑒別豬繁殖與呼吸綜合征病毒高致病性與經典毒株復合RT-PCR方法GB/T35912豬繁殖與呼吸綜合征病毒熒光RT-PCR檢測方法GB/T36195畜禽糞便無害化處理技術規范NY/T541獸醫診斷樣品采集、保存與運輸技術規范NY/T1569畜禽養殖場質量管理體系建設通則NY/T1952動物免疫接種技術規范NY/T2968種豬場建設標準3術語和定義下列術語和定義適用于本文件。3.1疫情發生場porcinereproductiveandrespiratorysyndromeoutbreakfarm豬繁殖與呼吸綜合征病毒的野毒株在豬群內發生水平傳播或垂直傳播，導致豬群出現急性暴發或存在豬只持續被感染。經由病原學和血清學檢測，可明確判定豬繁殖與呼吸綜合征病原和抗體均呈陽性的種豬場。3.2陽性不穩定場positiveunstablefarm豬繁殖與呼吸綜合征病毒的野毒株在豬群內持續通過水平傳播或垂直傳播，導致豬群中持續出現新的感染個體，疫情處于動態發展狀態。經由病原學和血清學檢測，可明確判定豬繁殖與呼吸綜合征病原和抗體均呈陽性，且豬群的陽性率及感染狀態存在波動變化的種豬場。3.3陽性穩定場positivestablefarmDB31/T1702—2026豬群中雖存在豬繁殖與呼吸綜合征野毒感染的帶毒豬，但未發現病毒傳播的明確證據，即帶毒豬不向外排毒。通過實驗室檢測，豬群抗體檢測持續呈陽性，然而對抗凝血、血清、家族口腔液、舌尖滲出液、處理液等樣品進行病原學檢測時，長期無法檢出病毒核酸；或僅在極少數情況下偶爾檢測到病原，但豬群內未出現新的感染病例，未形成病毒傳播鏈，豬群整體陽性率保持穩定，無上升趨勢的種豬場。3.4暫時陰性場provisionalnegativefarm引入的陰性后備母60天以上未發生抗體轉陽，且除母豬群外其余豬群抗體檢測均呈陰性，同時，場內所有豬群病原檢測結果均呈陰性的種豬場。3.5陰性場negativefarm成為暫時陰性場后1年內仍保持病原和抗體雙陰性的種豬場，或者是完全新建的病原和抗體雙陰性的種豬場或者是清群后重新建群的病原和抗體雙陰性的種豬場。4縮略語下列縮略語適用于本文件。5分級標準5.1本底調查5.1.1根據種豬場養殖量，按照50%預期流行率、95%置信區間，應分別從種公豬、生產母豬、后備種豬、保育豬和育肥豬等不同生產階段豬群中隨機采集病原學和血清學樣品，同步檢測PRRSV抗體和核酸，以全面掌握各生產階段豬群PRRS感染狀況。不同存欄數量的抽樣參見附錄A中表A.1。5.1.2各生產階段豬群監測樣品種類參見附錄A中表A.2。樣品采集、保存和運輸應符合NY/T5415.1.3病原學檢測方法，應按照GB/T18090或GB/T35912或GB/T27517，采用RT-PCR或實時熒光RT-PCR檢測PRRSV核酸。5.1.4血清學檢測方法，應按照GB/T18090，采用ELISA方法檢測PRRSV抗體。5.1.5實驗室檢測中涉及的生物安全，應符合GB19489的規定。5.2類別劃分根據本文件5.1本底調查中的病原學與血清學檢測結果，結合生產性能、健康狀況、引入種豬監測結果及各生產階段豬只持續性監測結果等輔助指標，對種豬場豬只的PRRSV感染狀態進行分類。依據種豬場豬只PRRSV感染狀態分級標準（見表1），可將其分為陰性場、暫時陰性場、陽性穩定場、陽性不穩定場和疫情發生場五類。DB31/T1702—2026表1種豬場豬只PRRSV感染狀態分級標準6凈化途徑6.1疫情發生場6.1.1疫情發生場應通過采取2次強化免疫，每次間隔20天，待達到陽性穩定場后，方可進行凈化。6.1.2種豬場為陽性穩定場時，應采取封群凈化法、檢測淘汰法等不同的凈化措施，逐步建立病原陰性種豬群。6.1.3凈化可采取以下方法進行：a)封群凈化法：由引入PRRS陰性后備種豬、封群、同群感染三個部分組成，即一次性引入未來5個月所需的PRRS陰性后備種豬；隨即實施為期200天以上的封閉管理，期間不應引入任何后備種豬和斷奶豬群；通過全群免疫2次疫苗，間隔30天或者馴化的方式實現同群統一感染；同時嚴格落實生物安全措施，有效阻斷外部PRRSV傳入及內部循環傳播，并持續開展病原學監測，直到豬群PRRSV逐步轉為陰性；在此基礎上，挑選病原學檢測呈陰性的后備種豬，建立凈化基礎群，該群所產后代仔豬在斷奶后，應與原種豬群隔離飼養，獨立培育成陰性豬群，用于凈化基礎群擴群；b)檢測淘汰法：全群同步強化免疫疫苗后，停止免疫且不應引入后備種豬；待實施封群管理200天后，對豬群進行病原學檢測，及時淘汰病原學陽性種豬，持續該流程，直至豬群中無病原學陽性種豬，方可引入PRRS陰性后備種豬。6.1.4建立病原陰性種豬群后，不應使用疫苗免疫。應采取封群凈化法、檢測淘汰法等不同的凈化措施，逐步建立暫時陰性場。6.1.5采用封群凈化法時，自封群后90天開始，應對未免疫PRRS疫苗的臨床斷奶仔豬開展病原學檢測，每次應隨機采集不少于30頭仔豬的抗凝血樣品，且樣品應覆蓋所有窩次，檢測間隔為14天。若連續4次病原學檢測結果均呈陰性，該場可判定為暫時陰性場。6.1.6采用檢測淘汰法時，應著重對新引入的陰性后備種豬群體開展抽樣檢測。當陰性后備種豬與場內種豬群混群飼養60天后，應對全群采集血清樣品進行血清學檢測。若檢測結果均為陰性，可認定該群體中無病毒循環。場內種豬群因前期免疫可能出現抗體陽性，但病原學檢測結果應呈陰性。若場內存在保育、育肥等生長豬群，其血清學檢測結果也應為陰性，滿足上述條件方可判定該場為暫時陰性場。6.1.7在成為暫時陰性場后，應連續監測豬群抗體，逐步降低豬群抗體陽性比例，待抗體陽性率降至10%以下時，應全群采集血清逐頭檢測，及時淘汰抗體陽性種豬，最終使豬群達到病原抗體雙陰性的豬群。6.1.8一旦發現病原陽性，立即淘汰病原陽性豬只，如果陽性范圍擴大，發生PRRS疫情，該場應重DB31/T1702—2026新開始凈化。6.2陽性不穩定場6.2.1陽性不穩定場應通過采取2次強化免疫，每次間隔20天，待達到陽性穩定場后，方可進行凈6.2.2達到陽性穩定場后，應按照本文件6.1.2～6.1.8規定的凈化途徑凈化。6.3陽性穩定場應按照本文件6.1.2～6.1.8規定的凈化途徑凈化。6.4暫時陰性場應按照本文件6.1.6～6.1.8規定的凈化途徑凈化。6.5陰性場6.5.1陰性場可直接進入凈化場維持。6.5.2一旦發現病原陽性，應立即淘汰病原陽性豬只，如果陽性范圍擴大，發生PRRS疫情，該場應重新開始凈化。7凈化場維持7.1種豬場為陰性場時，應采取凈化維持措施。7.2每季度應開展風險評估，按照附錄B執行。根據種豬場所處風險等級，應針對關鍵風險因素采取措施持續完善生物安全體系建設。7.3應持續開展監測和動態分析評估。監測采用定期監測和異常監測相結合方式，應按照附錄C執行。應根據定期監測和異常監測結果，結合生產管理、發病診療情況等，分析場內疫病流行狀況，評估豬群狀態。7.4豬舍溫濕度、飼養密度、糞污無害化處理、防疫管理、疫苗免疫和質量管理體系應分別符合相應標準，按照附錄D中D.1執行。引種應按照附錄D中D.2執行。8凈化場評估種豬場應符合下列所有條件，即達到PRRS的凈化標準：a)凈化場維持在12個月以上且無臨床病例；b)抽檢種公豬、生產母豬和后備種豬，PRRS病原學和血清學（僅檢測N蛋白抗體）檢測結果均為陰性。凈化場評估不同存欄數量的抽樣參見附錄E中表E.1。DB31/T1702—2026（資料性）本底調查階段抽樣和監測樣品種類A.1本底調查階段抽樣本底調查階段，對種公豬、生產母豬、后備種豬、保育豬和育肥豬等不同生產階段豬群分別抽樣，進行PRRS病原學和血清學檢測，以全面掌握各生產階段豬群PRRS感染狀況。按照50%預期流行率、95%置信區間，各生產階段不同存欄數量所需的抽樣數量見表A.1。表A.1本底調查階段抽樣參考表存欄數量（頭）抽樣數量（頭）存欄數量（頭）抽樣數量（頭）5033120015009173350078817500750∞A.2監測樣品種類各生產階段豬群監測樣品種類見表A.2。表A.2各生產階段豬群監測樣品種類監測樣品類型血清EDTA抗凝血淋巴結等）處理液家族口腔液舌尖滲出液（TTF）精液對象個體監測個體監測個體監測群體監測群體監測群體監測個體監測檢測方法血清學和病原學病原學病原學病原學病原學病原學病原學適用各生產階段豬群各生產階段豬群各生產階段豬群18日齡～斷奶仔和后備種豬群去勢-斷奶期間的新生仔豬種公豬DB31/T1702—2026（規范性）凈化場維持的風險評估B.1風險評估方法B.1.1輸入性風險評估根據輸入性風險評估原則和步驟，建立PRRS輸入的風險評估模型，見表B.1。對照輸入性風險評估模型，查找種豬場是否存在模型所列的3種類型、14種病原輸入主風險及其對應的19個風險事件，將結果帶入輸入性風險評估模型，確定每條風險因素導致的輸入風險等級和不確定度（見表B.2）。以實際存在的最高風險等級作為PRRS的輸入性風險級別。表B.1輸入性風險評估模型類型病原輸入主要風險風險事件暴露概率不確定度風險水平種豬場位置周邊豬場密度種豬場周邊3km內存在其它豬場臨近豬場情況臨近豬場3km）PRRSV有流行極高極高屠宰場距離種豬場與屠宰場距離＜3km地勢環境種豬場周邊無天然屏障引進帶毒豬只（近2年內）豬只混群前隔離檢疫發生漏檢或檢測假陰性極高極高豬只混群前隔離但不檢疫、不檢測豬只不隔離直接混群購入帶毒精液或胚出場前檢測發生漏檢或檢測假陰性極高極高出場前不檢測直接使用管理進入帶毒犬、貓無有效防范，自由進入進入帶毒鼠無有效防范，自由進入進入帶毒鳥無有效防范，自由進入飄入氣溶膠周邊≤0.5km存在帶毒氣溶膠，空氣未過濾或滅活病毒不徹底極高極高周邊0.5km～1km存在帶毒氣溶膠，空氣未過濾或滅活病毒不徹底周邊1km～3km存在帶毒氣溶膠，空氣未過濾或滅活病毒不徹底食用污染的飼料、水未滅活病毒或滅活病毒不徹底極高極高帶豬肉制品進場未滅活病毒或滅活病毒不徹底使用污染的運輸工具或器具未消毒或消毒不徹底進入帶病原人員未消毒或消毒不徹底DB31/T1702—2026表B.2不確定度的級別級別描述數據確鑿、完整；報道相互驗證；證據充分、有力數據不夠完整；報道不多；證據不夠有力數據極度缺乏；幾乎無相關報道；僅基于觀察而得B.1.2內部風險評估采用邏輯回歸方法，確定種豬場內部風險因素，并建立PRRS內部風險評估模型，見表B.3。對照內部風險評估模型，查找種豬場是否存在模型所列的6種類型、17種內部主風險及其對應的21個內部風險因素，將結果帶入內部風險評估模型，確定每條風險因素導致的內部風險等級和不確定度。以實際存在的最高風險等級作為PRRS的內部風險級別。表B.3內部風險評估模型類型內部主要風險風險因素暴露概率不確定度風險水平感染狀況疫病暴發情況種豬場3年內有PRRS疫情*極高臨床病例3年以來存在PRRS臨床病例*極高免疫狀況疫苗使用使用PRRSV弱毒疫苗管理病死豬收集點設置病死豬收集點設在場區內流產物處理未及時收集且未消毒*極高患病豬處理方式患病豬隔離治療但未采用隔離飼養內部人員串棚情況內部生產技術人員在不同功能分區和棟舍存在頻繁串棚物品、器具等使用不同豬舍物品、器具頻繁交叉使用免疫、治療時更換針頭情況免疫、治療時未做到一豬一針*場區消毒頻率消毒頻率少于3次/周布局凈、污道設置凈道、污道未分開凈道、污道有交叉，且無有效防止交叉的措施欄舍設置欄舍間無實體間隔隔離豬舍設置無隔離豬舍*極高設備投入未使用空氣高效過濾裝置飼養模式養殖密度養殖密度超過設計飼養密度飼養方式未采用“全進全出”飼養方式采用單點式飼養場群健康協同病原豬肺炎支原體感染豬圓環病毒感染豬流感病毒感染DB31/T1702—2026B.2組合風險將種豬場輸入性風險級別與內部風險級別帶入風險組合矩陣，輸入性風險評估模型見表B.1，內部風險評估模型見表B.3，確定組合風險等級見表B.4。表B.4風險組合矩陣內部風險水平輸入性風險水平極高極高極高極高極高B.3風險評估分級B.3.1高風險場滿足以下條件之一的種豬場，判定為PRRS高風險場：a)PRRS輸入性風險和內部風險的組合風險分級為高或極高的種豬場；b)近2年內，適齡豬只全群PRRS病原學監測有陽性的，或有PRRS臨床病例的種豬場。B.3.2中風險場滿足以下條件之一的種豬場，判定為PRRS中風險場：a)PRRS輸入性風險和內部風險的組合風險分級為中等的種豬場；b)近2年內，適齡豬只全群PRRS病原學監測均為陰性，且無PRRS病臨床病例，但近3年內有PRRS病原學監測陽性或臨床病例的種豬場。B.3.3低風險場同時滿足以下兩個條件的種豬場，判定為PRRS低風險場：a)PRRS輸入性風險和內部風險的組合風險分級為可忽略或低的種豬場；b)近3年內，所有適齡豬只全群PRRS病原學監測均為陰性，且無PRRS臨床病例的種豬場。DB31/T1702—2026（規范性）凈化場維持的監測和動態評估C.1定期監測C.1.1每季度應采集血清樣品開展血清學檢測。種公豬，應100%采集；生產母豬應按照妊娠30d~60d，妊娠60d～90d，產后3周，各群體隨機采集不少于30頭/次；保育、育肥等生長豬群，應按照8周齡、12周齡～14周齡、20周齡～22周齡，各群體隨機采集不少于30頭/次；后備種豬、引進種豬混群前應全群采集。C.1.2每季度應采集病原學樣品開展病原學檢測。應按照證明無疫公式，95%置信區間、5%預期流行率計算抗凝血抽樣量，見表C.1；5份～10份種公豬精液；5窩～10窩仔豬家族口腔液；5窩～10窩仔豬處理液；5窩～10窩仔豬舌尖滲出液。表C.1定期監測抽樣參考表存欄數量（頭）抽樣數量（頭）存欄數量（頭）抽樣數量（頭）503512005845150058515854350058555956750059750575957∞59C.2異常監測對異常豬只應采集樣品進行病原學檢測。異常豬只包括出現流產、早產、死胎或木乃伊胎等癥狀的生產母豬；出現體溫升高、采食量下降、有呼吸道癥狀等臨床癥狀的發病豬只以及出現異常死亡的病死豬。收集樣品種類包括病死豬的肺臟、扁桃體、淋巴結等組織、血液、口鼻拭子、