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文檔簡介
ICS65.020.01
CCSB04
15
內蒙古自治區地方標準
DB15/T3534—2024
籽用西葫蘆葉片三種病毒RT-PCR檢測
技術規程
TechnicalcodeofpracticeforRT-PCRdetectionofthreeviruses
fromleavesofseed-usedpumpkin(CucurbitapepoL.)
2024-06-28發布2024-07-28實施
內蒙古自治區市場監督管理局發布
DB15/T3534—2024
前言
本文件按照GB/T1.1—2020《標準化工作導則第1部分:標準化文件的結構和起草規則》的規定
起草。
本文件由內蒙古自治區農牧廳提出。
本文件由內蒙古自治區果蔬標準化技術委員會(SAM/TC25)歸口。
本文件起草單位:內蒙古農業大學、內蒙古弘昌農業有限責任公司、呼和浩市農牧技術推廣中心。
本文件主要起草人:王萍、龍建國、劉杰才、陳貴華、蘇利民、孫婧、許珂、尚鵬。
I
DB15/T3534—2024
籽用西葫蘆葉片三種病毒RT-PCR檢測技術規程
1范圍
本文件規定了籽用西葫蘆葉片三種病毒RT-PCR檢測技術中涉及的術語和定義、試劑與材料、儀器和
設備、對照設置、樣品采集、樣品病毒檢測、結果分析。
本文件適用于籽用西葫蘆葉片中黃瓜花葉病毒(Cucumbermosaicvirus,CMV)、西瓜花葉病毒
(Watermelonmosaicvirus,WMV)、小西葫蘆黃化花葉病毒(Zucchiniyellowmosaicvirus,ZYMV)
的RT-PCR檢測。
2規范性引用文件
本文件沒有規范性引用文件。
3術語和定義
下列術語和定義適用于本文件。
黃瓜花葉病毒Cucumbermosaicvirus
屬于雀麥花葉病毒科(Bromoviridae)黃瓜花葉病毒(Cucumovirus),可以侵染1000多種植物。
主要通過蚜蟲以非持久方式傳播,也是典型的種傳病毒。黃瓜花葉病毒一般為系統侵染植物,主要表現
為葉片斑駁花葉,葉肉淺綠,葉脈深綠;嚴重時呈現葉片皺縮,葉肉退化,蕨葉等癥狀。
西瓜花葉病毒Watermelonmosaicvirus
屬于馬鈴薯Y病毒科(Potyviridae)馬鈴薯Y病毒屬(Potyvirus),在自然界中通過蚜蟲以非持久
性方式傳播,也可經汁液摩擦接種傳播。受侵染的病株葉片表現花葉、畸形、新生葉片扭曲,植株生長
受阻,果實畸形。
小西葫蘆黃化花葉病毒Zucchiniyellowmosaicvirus
屬于馬鈴薯Y病毒科(Potyviridae)馬鈴薯Y病毒屬(Potyvirus),可由多種蚜蟲以非持久性方式
傳播,也能通過種子傳播。小西葫蘆黃化花葉病毒表現為系統侵染,整株花葉、黃化、葉片皺縮、果實
畸形、表面有泡狀或者瘤狀突起。
4試劑與材料
1
DB15/T3534—2024
試劑
瓊脂糖、核酸染料、PremixTaq酶、TRIzol試劑、PCR產物回收試劑盒、TransScriptOne-StepgDNA
RemovalandcDNASynthesisSuperMix試劑盒、pMD18-T載體、大腸桿菌感受態細胞DH5a、DNA分子量
標準:可以清楚區分100bp~500bp的DNA片段。
溶液配制
4.2.110mol/L氫氧化鈉(NaOH)溶液:在160mL水中加入80.0g氫氧化鈉,溶解后,冷卻至室溫,
再加水定容至200mL。
4.2.20.5mol/L乙二胺四乙酸二鈉(EDTA-Na2)溶液(pH8.0):稱取18.6g乙二胺四乙酸二鈉,加入
70mL水中,緩慢滴加氫氧化鈉溶液(見4.3)直至EDTA-Na2完全溶解,用氫氧化鈉溶液(見4.3)調pH
至8.0加水定容至100mL。在121℃條件下滅菌20min。
4.2.31mol/L三羥甲基氨基甲烷-鹽酸(Tris-HCL)溶液(pH8.0):稱取121.1g三羥甲基氨基甲烷溶
解于800mL水中,用鹽酸調pH至8.0加水定容至1000mL。在121℃條件下滅菌20min。
4.2.4TE緩沖液(pH8.0):分別量取10mL三羥甲基氨基甲烷-鹽酸溶液(見4.5)和2mL乙二胺四乙
酸二鈉溶液(見4.4),加水定容至1000mL。在121℃條件下滅菌20min。
4.2.550×TAE緩沖液:稱取242.2g三羥甲基氨基甲烷(Tris),先用500mL水加熱攪拌溶解后,加
入100mL乙二胺四乙酸二鈉溶液(見4.4),用冰乙酸調pH至8.0,然后加水定容至1000mL。使用時
用水稀釋成1×TAE。
4.2.6加樣緩沖液:稱取250.0mg溴酚藍,加入10mL水,在室溫下溶解12h;稱取250.0mg二甲
基苯腈藍,加10mL水溶解;稱取50.0g蔗糖,加30mL水溶解。混合以上3種溶液,加水定容至100
mL,在4℃下保存。
4.2.7CMV病毒檢測上游引物CMV-F:5’-TTCGATAAGAAGCTTGTTTCGCG-3’,下游引物CMV-R:5’-
AGACGTGGGAATGCGTTGGTGCT-3’。預期擴增目的片段大小為345bp(參見附錄A中的A.1)。
4.2.8WMV病毒檢測上游引物WMV-F:5’-CCAGTGGCAAAGGTGATA-3’,下游引物WMV-R:5’-
TGCTGCGTCTGAGAAATG-3’。預期擴增目的片段大小為435bp(參見附錄A中的A.2)。
4.2.9ZYMV病毒檢測上游引物ZYMV-F:5’-ATGCAGAGGCACCATACAT-3’,下游引物ZYMV-R:5’-
TACTGCATTGTGTTCACACC-3’。預期擴增目的片段大小為283bp(參見附錄A中的A.2)。
4.2.10引物溶液:用TE緩沖液(見4.6)將上述引物稀釋到10μmol/L。
5儀器和設備
分析天平、組織研磨儀、PCR擴增儀、電泳槽、電泳儀等電泳裝置、Nanodrop微量分光光度計、凝
膠成像系統或照相系統、切膠儀、離心機。
6對照設置
陽性對照
以通過RT-PCR擴增和測序分析明確含有CMV、WMV、ZYMV的樣品為陽性對照。
陰性對照
通過RT-PCR擴增明確不含有CMV、WMV、ZYMV的樣品為陰性對照。
2
DB15/T3534—2024
空白對照
以滅菌ddH2O作為模板進行PCR擴增的產物為空白對照。
7樣品采集
采集有明顯癥狀的疑似病毒感染的籽用西葫蘆葉片,放入自封袋中封口后,快速冷凍于液氮或干冰
中,進行檢測分析。如需長期保存可置于-80℃冰箱中。樣品應避免交叉污染。
8樣品病毒檢測
重復次數
每個對照和試樣設置2次重復。
RNA提取和質量檢測
8.2.1RNA提取:將樣品在液氮下研磨至粉狀后稱取0.1g,置于滅菌2mL離心管中,加入1mLTRIzol
試劑后混勻,提取總RNA。
8.2.2RNA濃度檢測:提取的樣品總RNA用Nanodrop微量分光光度計測定RNA相對濃度,當OD260/OD280
比值為1.8~2.0時,可用于RT-PCR檢測。
8.2.3RNA完整性檢測:取2μLRNA與4μL加樣緩沖液混合后,加入凝膠點樣孔,進行電泳檢測。
電泳結束后,觀察結果(參見附錄B.1)。如果總RNA條帶清楚,就可以用于后續實驗。
反轉錄
在離心管中加入1μgRNA模板,1μLAnchoredOligo(dT)18引物和RNase-FreeddH2O,混勻,
65℃孵育5min,冰浴2min。然后加入10μL2×TS反應液,1μL反轉錄酶和1μLgDNARemover,
輕輕混勻,42℃孵育30min。85℃加熱5sec終止反應,-20℃冰箱保存備用。
PCR擴增
8.4.1在PCR管中按表1依次加入反應試劑,混勻。
表1PCR擴增體系
試劑體積
PremixTaq25μL
cDNA2μL
10μmol/L上游引物1μL
10μmol/L下游引物1μL
ddH2O補足50μL
8.4.2將PCR管放入離心機中,瞬時離心2sec,取出PCR管,放入PCR儀中。
8.4.3PCR反應程序:94℃預變性3min;94℃變性30sec,退火30sec(CMV58℃,WMV50℃,
ZYMV50℃),72℃延伸1min,35個循環;72℃延伸10min,4℃保存。
8.4.4反應結束后取出PCR管,對PCR擴增產物進行電泳檢測。
瓊脂糖凝膠電泳檢測
3
DB15/T3534—2024
8.5.1稱量1g瓊脂糖加入到100mL1×TAE緩沖液中,加熱混勻。冷卻后加入8μL核酸染料,混
勻,將其倒入電泳槽,插上梳板。室溫下凝固成凝膠后,倒入1×TAE緩沖液中,垂直向上輕輕拔去梳
板。取5μLPCR產物與10μL加樣緩沖液混合后,加入凝膠點樣孔,同時在其中一個點樣孔加入DNA
分子量標準,進行電泳檢測。
8.5.2電泳結束后,取出瓊脂糖凝膠,置于凝膠成像儀上成像,進行結果分析。
測序驗證
PCR產物用凝膠回收試劑盒純化目的片段,并在4℃連接至pMD18-T載體,轉化到大腸桿菌感受態
細胞DH5a,經藍白斑篩選,挑取陽性克隆,送至公司測序。獲得的序列與NCBI數據庫的CMV、WMV、ZYMV
病毒序列(參見附錄A)比對,確定PCR擴增的DNA片段是否為目的DNA片段。
9結果分析
參見附錄B.2,陽性對照CMV在345bp、WMV在485bp、ZYMV在283bp處有目標條帶,陰性和空
白對照無條帶,判定結果有效。陽性對照無條帶或陰性和空白對照有條帶,判定結果無效,需要重復檢
測。當結果有效時,試樣檢測出目標條帶判定為病毒感染。
4
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A
A
附錄A
(資料性)
籽用西葫蘆葉片CMV/WMV/ZYMV特異性片段序列
A.1CMV特異性片段序列
A.2WMV特異性片段序列
A.3ZYMV特異性片段序列
注1:序列方向為5’-3’。
注2:5’下劃線為PCR上游引物序列,3’下劃線為PCR下游引物的反向互補序列。
5
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B
B
附錄B
(資料性)
籽用西葫蘆葉片CMV/WMV/ZYMV的RT-PCR檢測電泳圖
B.1籽用西葫蘆葉片總RNA電泳圖譜見圖B.1。
圖B.1籽用西葫蘆葉片總RNA電泳圖
B.2籽用西葫蘆葉片病毒RT-PCR檢測電泳圖見圖B.2。
CMV
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