第6章分子生物學研究法(下)

第6章分子生物學研究法(下)

——基因功能研究技術教學目的：1.熟悉基因表達研究技術的原理和流程。2.熟悉基因敲除的原理和類型。3.熟悉基因芯片技術的原理和工作流程。4.了解利用酵母來鑒定靶基因的功能。教學重點：各種技術的基本原理和流程。1第6章分子生物學研究法(下)

——基因功能研究技術6.1基因表達研究技術6.2基因敲除技術6.3蛋白質及RNA相互作用技術6.4基因芯片及數據分析6.5利用酵母鑒定靶基因功能6.6其他分子生物學技術26.1基因表達研究技術轉錄組廣義上指在特定生理條件或環境下，一個細胞、組織或生物體中轉錄出來的所有RNA的集合，包括mRNA、rRNA、tRNA、sRNA。狹義上特指細胞中轉錄出來的所有mRNA。通過特定生理條件下細胞內mRNA的豐度來描述基因表達水平并外推到最終蛋白質產物的豐度，是目前基因表達研究的基本思路。轉錄組研究的基本方法包括基因芯片技術和轉錄組測序技術。6.1.1轉錄組測序31)表達序列標簽測序(EST)原理：EST是從一個隨機選擇的cDNA克隆進行5端和3端單向一次測序獲得的短的cDNA部分序列，代表一個完整基因的一小部分，在數據庫中其長度一般從20到7000bp不等，平均長度為360±120bp。EST來源于一定環境下一個組織總mRNA所構建的cDNA文庫，因此EST也能說明該組織中各基因的表達水平。操作流程：組織樣品mRNA的提取→逆轉錄合成cDNA→構建cDNA文庫→測序。42)基因表達系列分析(SAGE)原理:SAGE是通過快速和詳細分析成千上萬個EST來尋找出表達豐富度不同的SAGE標簽序列。通過限制性酶切可以產生非常短的cDNA標簽，并通過PCR擴增和連接，隨后對連接體進行測序。操作流程：以寡聚dT為引物反轉錄合成cDNA，用錨定酶酶切。將cDNA等分為A和B兩部分，分別連接接頭A或接頭B。每一種接頭都含有標簽酶酶切位點序列.用標簽酶酶切產生連有接頭的短cDNA片段，混合并連接兩個cDNA池的短cDNA片段，構成雙標簽后，以引物A和B擴增。用錨定酶切割擴增產物，抽提雙標簽片段并克隆、測序。對標簽數據進行處理。563)轉錄組高通量測序(RNA-Seq)原理：所有的高通量測序技術都能進行RNA測序。對cDNA進行高通量測序，以獲得來不同mRNA片段在特定樣本中的含量。各種類型的轉錄本都可以進行高通量檢測。操作流程：樣品RNA準備cDNA文庫構建DNA成簇擴增高通量測序數據分析76.1.2RNA的選擇性剪接技術RNA的選擇性剪接是指用不同的剪接方式從一個mRNA前體產生不同的mRNA剪接異構體的過程。選擇性剪接可分為：平衡剪切、5選擇性剪切、3選擇性剪切、外顯子遺漏型剪切及相互排斥型剪切。常用RT-PCR法研究某個基因是否存在選擇性剪切。89106.1.3原位雜交技術原位雜交技術(ISH)是用標記的核酸探針，經放射自顯影或非放射檢測體系，在組織，細胞、間期核及染色體上對核酸進行定位和相對定量研究的一種手段。原位雜交分為RNA原位雜交和染色體原位雜交。RNA原位雜交組織切片中，對特定基因的表達產物(mRNA)在細胞水平上作出定性定量分析。染色體原位雜交也稱為熒光原位雜交(FISH)

可確定特定的DNA序列在染色體上的位置。11原理：利用核酸分子單鏈之間有互補的堿基序列，將有放射性或非放射性的外源核酸(即探針)與組織、細胞或染色體上待測DNA或RNA互補配對，結合成專一的核酸雜交分子，經一定的檢測手段將待測核酸在組織、細胞或染色體上的位置顯示出來。操作流程：以經過標記的已知核酸分子為探針。以細胞內與探針序列互補的特異核酸分子為靶分子。在一定條件下使探針與靶核酸分子在原位發生雜交。再對其探測。1213146.1.4基因定點突變技術通過改變基因特定位點核苷酸序列來改變所編碼的氨基酸序列，用于研究某個(些)氨基酸殘基對蛋白質結構、催化活性以及結合配體能力的影響。基因定點突變也可用于改造DNA調控元件特征序列、修飾表達載體、引入新的酶切位點等。寡核苷酸介導的基因突變指用含有突變堿基的寡聚核苷酸片斷作為引物，在聚合酶的作用下啟動DNA分子進行復制。目前，在基因序列中進行定點突變，主要采用兩種PCR方法，重疊延伸技術和大引物誘變法。151)寡核苷酸定點突變原理：合成一段寡聚脫氧核糖核苷酸作為引物，其中含有需要改變的堿基，使其與帶有目的基因的單鏈DNA配對。合成的寡聚核苷酸引物除短的錯配區外，與目的基因完全互補。用DNA聚合酶使寡聚核苷酸引物延伸，完成單鏈DNA的復制。由此產生的雙鏈DNA，一條鏈為野生型親代鏈，另一條為突變型子鏈。將獲得的雙鏈分子通過轉導導入宿主細胞，并篩選出突變體，其中基因已被定向修改。16操作流程：合成一段含有需要改變堿基的寡聚核苷酸引物。構建含靶序列的單鏈重組M13DNA。用DNA聚合酶延伸誘變寡核苷酸引物，形成雜合雙鏈M13DNA。轉染大腸桿菌，篩選攜帶突變體克隆的M13噬菌斑。純化突變體，序列序列分析驗證。172)重疊延伸PCR誘變法原理：對于兩個具有部分重疊序列的DNA片段，在經過變性和復性后，兩個DNA片段之間通過同源序列形成部分雜合的雙鏈，在DNA聚合酶作用下，雜合雙鏈可互為引物和模板，引導DNA的合成，從而形成雜合DNA雙鏈。操作流程：將DNA模板分別與引物對1和引物對2退火。通過PCR1和PCR2擴增出兩種靶基因片段。FMR2和RMF2片段在重疊區發生退火。用DNA聚合酶補平缺口，形成長鏈DNA，PCR3擴增。用引物F2和R2擴增出帶有突變位點的全長DNA片段。18193)大引物PCR誘變法首先用正向突變引物(M)和反向引物(R1)擴增模板DNA產生雙鏈大引物(PCR1)。將雙鏈大引物(PCR1)與野生型DNA分子混合后退火并使之復性。第二輪PCR中加入正向引物(F2)，與PCR1中的互補鏈配對，擴增產生帶有突變的雙鏈DNA。由于F2的退火溫度顯著高于M和R1，可忽略引物M和R1在本輪反應中所造成的干擾。獲得定點突變PCR產物后，進行DNA序列分析以驗證突變位點。2021PCR介導的定點突變方法的優勢：突變體回收率高；能用雙鏈DNA作為模板，可在任何位點引入突變；可在同一試管中完成所有反應；快速簡便；PCR介導的定點突變方法已成為定點突變的主要技術。226.2基因敲除技術經典遺傳學是從一個突變體的表型出發，研究其基因型，進而找出該基因的編碼序列。現代遺傳學(反向遺傳學)首先從基因序列出發，推測其表現型，進而推導出該基因的功能。基因敲除又稱基因打靶，通過外源DNA與染色體DNA之間的同源重組，進行精確的定點修飾和基因改造，具有專一性強、染色體DNA可與目的片段共同穩定遺傳等特點。6.2.1基本原理23基因敲除為完全基因敲除和條件型基因敲除。完全基因敲除指通過同源重組法完全消除細胞或者動物個體中的靶基因活性。條件型基因敲除指通過定位重組系統實現特定時間和空間的基因敲除。噬菌體的Cre/Loxp系統、Gin/Gix系統，酵母細胞的FLP/FRT系統和R/RS系統是現階段常用的四種定位重組系統。Cre/Loxp系統應用最為廣泛。241)完全基因敲除采用取代型或插入型載體在胚胎干細胞中根據正-負篩選原理進行完全基因敲除。正向選擇基因neo(新霉素抗性基因)通常被插入載體靶DNA功能最關鍵的外顯子中，或通過同源重組法置換靶基因的功能區。負向選擇基因HSV-tk(單純皰疹病毒胸苷激酶基因)則被置于目的片段外側，含有該基因的重組細胞不能在選擇培養基上生長。如果細胞中發生了隨機重組，負向選擇基因就可能被整合到基因組中，導致細胞死亡。用分子篩選技術對細胞系進行驗證，確定是否敲除了目的基因。25262)條件型基因敲除構建條件型基因敲除打靶載體，將正向選擇標記neo置于靶基因的內含子中，并在靶基因重要功能域兩側內含子中插入同向LoxP位點。需要消除靶基因活性時，與帶有Cre重組酶基因的ES細胞雜交，Cre可把兩個LoxP位點間的DNA片段切除，導致靶基因失活。Cre重組酶是細菌噬菌體P1的I型拓撲異構酶，催化LoxP位點間的DNA進行位點特異性重組。

也可用Cre表達質粒轉染中靶ES細胞，通過重組將兩個LoxP位點間的neo抗性基因刪除。27286.2.2高等動物基因敲除技術胚胎干細胞(ES細胞)分離和體外培養的成功奠定了哺乳動物基因敲除的技術基礎。真核生物基因敲除的技術路線主要包括構建重組基因載體，用電穿孔、顯微注射等方法把重組DNA導入胚胎干細胞純系中，使外源DNA與胚胎干細胞基因組中相應部分發生同源重組，將重組載體中的DNA序列整合到內源基因組中并得以表達。顯微注射命中率較高，技術難度相對大些。電穿孔法命中率比顯微注射低，操作使用方便。29306.2.3植物基因敲除技術T-DNA插入失活技術是目前在植物中使用最為廣泛的基因敲除手段。利用根癌農桿菌T-DNA介導轉化，將帶有報告基因的DNA序列整合到基因組DNA上，如果這段DNA插入到目的基因內部或附近，就會影響該基因的表達，從而使該基因“失活”。在該基因內部或附近插入了一段已知序列的DNA，可設計引物將被破壞了的靶序列PCR擴增出來。將靶基因兩端的引物LP、RP及插入載體上的引物LB在同一體系PCR擴增，可得3種類型的條帶。31326.3蛋白質及RNA相互作用技術酵母單雜交系統是上世紀90年代中發展起來的研究DNA-蛋白質之間相互作用的新技術。該技術可識別穩定結合于DNA上的蛋白質，在酵母細胞內研究真核生物中DNA-蛋白質之間的相互作用，并通過篩選DNA文庫直接獲得靶序列相互作用蛋白的編碼基因。將已知順式作用元件構建到最基本啟動子(Pmin)的上游，把報告基因連接到Pmin下游。6.3.1酵母單雜交系統33將編碼待測轉錄因子cDNA與已知酵母轉錄激活結構域(AD)融合表達載體導入酵母細胞，該基因產物如果能夠與順式作用元件相結合，就能激活Pmin啟動子，使報告基因得到表達。34356.3.2酵母雙雜交系統核生物轉錄調控因子具有組件式結構特征，這些蛋白往往由兩個或兩個以上相互獨立的結構域構成，其中DNA結合結構域(BD)和轉錄激活結構域(AD)是轉錄激活因子發揮功能所必須的。BD能與特定基因啟動區結合，但不能激活基因轉錄，由不同轉錄調控因子的BD和AD所形成的雜合蛋白卻能行使激活轉錄的功能。先用基因重組技術將編碼已知蛋白的DNA序列連接到帶有酵母轉錄調控因子(GAL1、GAL4)DNABD編碼區的表達載體上。36導入酵母細胞中使之表達帶有DNA結合結構域的雜合蛋白，與報告基因上游的啟動調控區相結合，將作為“誘餌”捕獲與已知蛋白相互作用的基因產物。再將已知編碼AD的DNA分別與待篩選的cDNA文庫中不同插入片段相連，獲得“獵物”載體，轉化含有“誘餌”的酵母菌。如果酵母細胞表達的“誘餌”蛋白與“獵物”載體表達的某個蛋白質發生作用，不同轉錄調控因子的AD和BD就會靠攏，激活報告基因表達。分離有報告基因活性的酵母菌，得到所需的“獵物”載體，就能得到與已知蛋白質作用的新基因。37386.3.3蛋白質相互作用技術將誘餌蛋白結合于葡聚糖表面并固定于納米級厚度的金屬膜上。當蛋白質混合物經過時，如果有蛋白質同“誘餌”蛋白發生相互作用，那么兩者的結合將使金屬膜表面的折射率上升，導致共振角度的改變。1)等離子表面共振技術(SPR)共振角度的改變與該處蛋白質濃度成線性關系。由此可檢測蛋白質之間的相互作用。392)免疫共沉淀技術(CoIP)將靶蛋白的抗體連接到固體基質上。再將可能與靶蛋白發生相互作用的待篩選蛋白加入反應體系中。用低離心力沉淀或微膜過濾法在固體基質和抗體的共同作用下將蛋白復合物沉淀到試管的底部或微膜上。403)GST及GAD融合蛋白沉降技術GST融合蛋白是將谷胱甘肽S轉移酶(GST)與目標蛋白做成融合蛋白的方式在外源表達。利用GST對谷胱甘肽偶聯的瓊脂糖球珠的親和性，從混合蛋白質樣品中純化得到相互作用蛋白。GST沉降應用于確定探針蛋白與未知蛋白以及探針蛋白與已知蛋白間的相互作用。41GAD融合蛋白是由酵母轉錄調控因子(Gal4)的轉錄激活結構域(GAD)與植物色素相互作用因子(PIF3)構成。將GAD與PIF3的不同區段相接成為誘餌，研究該重組蛋白在體外與光敏素B(phyB)與缺失N-37位氨基酸的突變體或光敏素(phyA)的相互作用。光敏素B能與PIF3發生強烈的相互作用，超過30%的phyB被PIF3沉淀下來。缺失N-37位氨基酸的phyB突變體及phyA只能與PIF3發生較弱的作用，約5%的phyA或約10%的N-37位氨基酸缺失突變的phyB被沉淀下來。424)熒光共振能量轉移法(FRET)FRET用于細胞內蛋白質的相互作用研究。FRET熒光能量轉移有三個基本條件：給體與受體在合適的距離(1~10nm)；給體的發射光譜與受體的吸收光譜有一定的重疊(這是能量匹配的條件)；給體與受體的偶極具有一定的空間取向(這是偶極-偶極耦合作用的條件)。FRET需要有兩個探針，即熒光給體和熒光受體，要求給體的發射光譜與受體的吸收光譜有一定的重疊，而與受體的發射光譜盡量沒有重疊。不同蛋白的吸收和發射波長不同，可根據需要組成不同的探針對。43常用的探針有3類：熒光蛋白一類能發射熒光的天然蛋白及其突變體。常見的有綠色(GFP)、藍色(BFP)、青色(CFP)和黃色(YFP)熒光蛋白等。有機染料具有特征吸收和發射光譜的有機化合物組成的染料對。包括熒光素、羅丹明類化合物和青色染料Cy3、Cy5等。鑭系染料(金屬染料)一般與有機染料聯用，分別作為FRET的給體或受體，以提高檢測的準確性和信噪比。446.3.4染色質免疫共沉淀技術(ChIP)

ChIP是一種在體內研究DNA與蛋白質相互作用的方法。ChIP不僅可以檢測體內反式因子與DNA的動態作用，還可以用來研究組蛋白的各種共價修飾與基因表達的關系。ChIP流程(見P226圖6-30)：

在活細胞狀態下固定蛋白質-DNA復合物。超聲或酶切處理將其隨機切成染色質小片段。通過抗原抗體的特異識別反應，沉淀該復合物。富集與目的蛋白質結合的DNA片段。對目的DNA片段進行純化和PCR檢測。456.3.5RNA干涉技術及其應用RNA干涉(RNAi)技術是利用雙鏈小RNA高效、特異性降解細胞內同源mRNA從而阻斷靶基因表達，使細胞出現靶基因缺失的表型。雙鏈RNA是RNAi的觸發物，引發與之互補的單鏈RNA(ssRNA)的降解。經過Dicer(一種具有RNAaseIII活性的核酸酶)的加工，細胞中較長的雙鏈RNA(30個核苷酸以上)首先被降解形成21~25個核苷酸的小分子干擾核糖核酸(siRNA)，并有效地定位目標mRNA。46siRNA是引發轉錄后基因沉默中序列特異性RNA降解的重要中間媒介，它具有特殊的結構特征，即5端磷酸基團和3端的羥基，其兩條鏈的3端各有兩個堿基突出于末端。由siRNA中的反義鏈參與指導合成被稱為RNA誘導的沉默復合體(RISC)的核蛋白體，再由RISC介導切割目的mRNA分子中與siRNA反義鏈互補的區域，從而實現干擾靶基因表達的功能。哺乳動物細胞內，較長的雙鏈RNA(dsRNA)會導致非特異性基因沉默，只有21~25個核苷酸的siRNA才能有效引發特異性基因沉默。非哺乳動物可用較長dsRNA直接誘導產生RNAi。47486.4基因芯片及數據分析核酸雜交技術是基因芯片應用的基礎。基因芯片(DNAchip)，又稱DNA芯片，是指將許多特定的寡核苷酸片段或基因片段作為探針，有規律地排列固定于支持物上。然后與待測的標記樣品的基因按堿基配對原理進行雜交，再通過激光共聚焦熒光檢測系統等對芯片進行掃描。6.4.1基因芯片技術原理并配以計算機系統對每一探針上的熒光信號進行比較和檢測，而迅速得出所要的信息。496.4.2基因芯片的點制過程基因芯片的實質是高度集成的寡核苷酸陣列。制作簡易基因芯片時，用機械臂把DNA片段點在玻璃片或尼龍膜上，經過物理吸附作用達到固化。也可以直接在玻璃板表面進行化學合成，從而得到寡聚核苷酸芯片。將芯片與待研究的cDNA或其它樣品雜交，經過計算機掃描和數據處理，便可以觀察到大規模的基因群在不同組織或同一組織不同發育時期或不同生理條件下的表達調控情況。1)簡易基因芯片502)大規模基因芯片簡易芯片一般基因數量少(一般不超過2000)，主要用于研究小部分特定基因的表達狀態。可用手工制作或者機械手點樣。大規模基因芯片通常涉及基因組規模與數量大(一般大于10000個基因)，分別采用接觸式點樣，非接觸式點樣或者半導體技術制備樣品。基因芯片技術包括四個主要步驟：芯片制備、樣品制備、雜交反應、信號檢測和結果分析。5152基因芯片的工作流程：經大規模PCR擴增獲得獨立cDNA片段。用機械手將PCR產物點在合適的介質上，變性、固定。從不同器官或組織中分離mRNA，反轉錄生成cDNA。用不同的熒光染料標記不同的cDNA樣本。將標記后的cDNA與點好的芯片進行雜交。激光掃描芯片雜交結果，計算機處理。分析芯片雜交數據。PCR擴增靶基因標記原位合成合成點樣芯片雜交雜交檢測數據分析實際應用提出問題芯片設計芯片制作試樣處理表達差異分析多態性分析再測序生物信息學數學優化數據庫標準化536.4.3基因芯片數據分析數據可靠性分析：通過兩次平行雜交反應，將每個基因在兩個反應中的表達水平做成對應散點圖，只要絕大多數基因的雜交結果都在45o斜線附近，就說明實驗結果是可靠的。用多個管家基因作為內對照，管家基因的反應信號在兩種組織中不變，可確定其他基因表達信號的相對值。生物學意義分析分析芯片雜交數據，研究差異表達基因的生物學意義。將差異表達定位于不同的生物化學代謝途徑，研究基因芯片數據中可能具有生物學意義的代謝途徑。546.5利用酵母鑒定靶基因功能酵母菌是單細胞真核生物，具有與動植物細胞相似的結構特征。釀酒酵母有穩定的單倍體和二倍體細胞，是最早完成基因組DNA全序列測定的真核生物。導入酵母細胞中的DNA即能以自主復制的分子形式存在，也可被整合到基因組的方式存在。酵母中轉化DNA的整合重組主要通過同源重組方式進行，整合效率較高。6.5.1酵母的遺傳學和分子生物學簡介55酵母單倍體和二倍體的重大差異：二倍體細胞直徑大約是單倍體的1.3倍。二倍體細胞呈長形或卵圓形，單倍體通常接近圓形。二倍體細胞按極性方向出芽，單倍體按軸線方向出芽。酵母細胞有三種交配型：單倍體MATa；MATα二倍體MATa/αMATa與MATα交配形成MATa/α。MATa/α不能與MATa或MATα交配。二倍體酵母細胞在營養缺乏的條件下能通過減數分裂形成單倍體的孢子。從單個孢子來源的所有細胞都帶有一套相同的染色體DNA。56576.5.2酵母基因轉化與性狀互補利用整合型質粒(Yip)可以對酵母基因組中的任意基因進行精確的敲除(置換)。帶有致死位點和可能的外源功能互補基因的酵母二倍體細胞在饑餓條件下形成四分體孢子，通過四分體分析技術進行觀測和研究。如果引入的外源基因具有互補突變點的功能，含有突變基因的單倍體可以存活，否則就不能存活。586.5.3外源基因在酵母中的功能鑒定將外源基因克隆于酵母表達載體上，轉化野生型或突變酵母菌株，通過觀察酵母的表型變化或分析細胞中化學成分的變化即可推測該基因的生物學功能。酵母細胞中有與動植物細胞接近的蛋白質轉錄后修飾系統，許多在大腸桿菌中不能產生功能蛋白質的動植物基因在酵母中表達后往往具有生物學功能。596.6其他分子生物學技術凝膠滯緩(EMSA)技術是用于體外研究DNA與蛋白質相互作用的一種特殊的凝膠電泳技術。基本原理：在凝膠電泳中，由于電場的作用，裸露的DNA朝正電極移動的距離與其分子量的對數成反比。如果DNA分子與某種蛋白質相結合，導致分子量增大，在凝膠中的遷移作用受到阻滯，在特定電壓和時間內朝正電極移動的距離也就相應縮短了。6.6.1凝膠滯緩實驗60方法：同位素標記待測的DNA片段細胞提取物DNA-蛋白質復合物探針DNA溫育PAGE電泳放射自顯影進行DNA凝膠分析616.6.2噬菌體展示技術噬菌體是細菌病毒的總稱。噬菌體可被分為溶菌周期和溶源周期兩種不同的類型。只具有溶菌生長周期的噬菌體稱為烈性噬菌體。具有溶源周期的噬菌體稱為溫和噬菌體。基本原理：將編碼“誘餌”蛋白的DNA片段插入噬菌體基因組，與編碼噬菌體外殼蛋白的基因相融合。重組噬菌體侵染宿主細菌后，復制形成大量帶有雜合外殼蛋白的噬菌體顆粒，直接用于捕獲靶蛋白庫中與“誘餌”相互作用的蛋白質。62噬菌體展示技術的基本流程：636.6.3蛋白質磷酸化分析技術細胞的生長發育、周期調控、基因表達、蛋白質合成、神經活動、肌肉收縮等都離不開蛋白質特異性磷酸化或去磷酸化。由蛋白激酶和蛋白磷酸酯酶所催化的蛋白質可逆磷酸化過程，是生物體內普遍而重要的調控方式，控制著眾多的生理生化反應和生物學過程。蛋白激酶催化ATP或GTP的γ-磷酸基團轉移到底物蛋白的絲氨酸、酪氨酸、蘇氨酰殘基上，使底物蛋白磷酸化。蛋白磷酸酯酶催化磷酸化的底物蛋白去磷酸化。6465蛋白質磷酸化分析技術主要是對底物磷酸化和蛋白激酶活性進行檢測。用雙向電泳及質譜分析檢測底物蛋白磷酸化。細胞內的蛋白激酶多達上千個，體內檢測某個蛋白激酶活性非常困難。用體外激酶活性分析法檢測蛋白激酶的活性。體外激酶活性分析技術主要包括獲得底物蛋白和待測蛋白激酶，進行蛋白質體外磷酸化反應。體外激酶活性分析法能可靠地鑒定某個蛋白激酶對底物的磷酸化作用，篩查激酶的特異性底物。66676.6.4蛋白質免疫印跡與抗體制備印跡法(blotting)是指將樣品轉移到固相載體上，而后利用相應的探測反應來檢測樣品的一種方法。1975年，Southern建立了將DNA轉移到硝酸纖維素膜(NC膜)上，并利用DNA-RNA雜交檢測特定的DNA片段的方法，稱Southern印跡法。后來對RNA的印跡分析稱Northern印跡法。對單向電泳后蛋白質的印跡分析稱Western印跡法。對雙向電泳后蛋白質的印跡分析稱Eastern印跡法。1)蛋白質免疫印跡(Westernblotting)68蛋白質免疫印跡的基本原理：將通過PAGE分離的蛋白質轉移到NC膜或PVDF膜上。然后與能特異性識別待檢蛋白的抗體進行反應。洗滌去除沒有結合的特異性抗體后。加入標記的、能識別特異性抗體的種屬特異性抗體，反應一段